:: دوره 28، شماره 1 - ( بهار 1397 ) ::
جلد 28 شماره 1 صفحات 74-80 برگشت به فهرست نسخه ها
بررسی مقاومت دارویی سویه های استافیلوکوکوس اورئوس مقاوم به آنتی-بیوتیک ونکومایسین در برخی از بیمارستان‌های شهر رشت
الهام امیری* 1، معصومه انوری2
1- کارشناسی ارشد، دانشگاه آزاد اسلامی واحد رشت، گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه ، Elham.amiri56@ yahoo.com
2- دانشیار دانشگاه آزاد اسلامی واحد رشت، گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه
چکیده:   (712 مشاهده)
سابقه و هدف: استافیلوکوکوس اورئوس از مهم‌ترین عوامل عفونت‌های بیمارستانی و اکتسابی از جامعه است و نسبت به طیف وسیعی از آنتی­بیوتیک‌ها مقاومت نشان می‌دهد. هدف از این مطالعه، بررسی فنوتیپی و مولکولی ایزوله های بالینی استافیلوکوکوس اورئوس مقاوم به ونکومایسین جدا شده از بیمارستان‌های شهر رشت در یک دوره شش ماهه (بهمن 94 تاتیر 95) بود.
روش بررسی: 217 نمونه بالینی از بخش­های مختلف بیمارستان­های شهر رشت جمع آوری شدند. ایزوله­های استافیلوکوکوس اورئوس با تست­های بیوشیمیایی تعیین هویت شدند. جهت تعیین مقاومت میکروبی سویه­ها به آنتی بیوتیک ونکومایسین از آزمون­های فنوتیپی دیسک دیفیوژن (طبق دستورالعمل CLSI) و حداقل غلظت مهار کنندگی به روش ماکرودایلوشن براث استفاده شد. همچنین حضور ژن VanA،  کد کننده مقاومت به آنتی بیوتیک ونکومایسین در ایزوله های جدا شده،  به روش PCR مورد بررسی قرار گرفت.
یافته­ها: 67 سویه استافیلوکوکوس اورئوس تعیین هویت شدند. در تست تعیین مقاومت آنتی بیوتیکی به روش دیسک دیفیوژن، میزان مقاومت به آنتی­بیوتیک­های کلرامفنیکل 5/10درصد، جنتامایسین 37/25درصد، تتراسایکلین 32/37درصد، ونکومایسین 80/38 درصد، اگـزاسیلین 70/44درصد، پنی­سیلین 100درصد بود. در روش ماکرودایلوشن براث، 4/22 درصد نمونه­ها مقاومت به ونکومایسین  را نشان دادند. در روش  PCR، برای ژن VanA باندی مشاهده نشد.
نتیجه­گیری: توصیه می­شود در مطالعات مولکولی، حضور ژن­های VanA و VanB  هر دو بررسی شود، چرا که علت مقاومت می­تواند مربوط به حضور ژن VanB باشد.
واژه‌های کلیدی: استافیلوکوکوس اورئوس، ونکومایسین، مقاومت آنتی بیوتیکی، VanA
متن کامل [PDF 163 kb]   (124 دریافت)    
نوع مطالعه: تحليلي/مقطعي/توصيفي | موضوع مقاله: زيست شناسي مولكولي
دریافت: ۱۳۹۶/۲/۲۴ | پذیرش: ۱۳۹۶/۴/۲۰ | انتشار: ۱۳۹۷/۱/۱۲
فهرست منابع
1. Cupane L, Pugacova N, Berzina D, Cauce V, Gardovska D, Miklasevics E. Patients with Panton- Valentine leukocidin positive Staphylococcus aureus infections run an increased risk of longer hospitalization. Int J Mol Epidemiol Genet 2012;3:48-55.
2. Silva EC, Antas Md, Monteiro B Neto A, Rabelo MA, Melo FL, Maciel MA. Prevalence and risk factors for Staphylococcus aureus in health care workers at a university hospital of Recife-PE. Braz J Infect Dis 2008;12:504-8. [DOI:10.1590/S1413-86702008000600012]
3. Gu J, Xu W, Lei L, Huang J, Feng X, Sun C, et al. LysGH15, a novel bacteriophage lysin, protects a murine bacteremia model efficiently against lethal methicillin-resistant Staphylococcus aureus infection. J Clin Microbiol 2011;49:111-7. [DOI:10.1128/JCM.01144-10]
4. Kluytmans J, van Belkum A, Verbrugh H. Nasal carriage of Staphylococcus aureus: epidemiology, underlying mechanisms and associated risks. Clin Microbiol Rev 1997;10:505-20.
5. Woo P, Lau SK, Wong SS, Yuen KY.Staphylococcus aureus subcutaneous abscess complicating acupuncture need for implementation of proper infection control guidelines. New Microbiol 2003;26:169-74.
6. Chambers HF, DeLeo FR. Waves of resistance: Staphylococcus aureus in the antibiotic era. Nat Rev Microbiol 2009;7:629-41. [DOI:10.1038/nrmicro2200]
7. Kaplan SL, Hulten KG, Gonzalez BE, Hammerman WA, Lamberth L, Versalovic J, et al. Three-year surveillance of community-acquired Staphylococcus aureus infections in children. Clin Infect Dis 2005;40:178- 91. [DOI:10.1086/430312]
8. Noble WC, Virani Z, Cree RG. Co-transfer of Vancomycin and other resistance genes from Enterococcus faecalis NCTC 12201 to Staphylococcus aureus. FEMS Microbiol Lett 1992;93:195-8. [DOI:10.1111/j.1574-6968.1992.tb05089.x]
9. Deresinski S. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus: an evolutionary, epidemiologic, and therapeutic odyssey. Clin Infect Dis 2005;40:562-73. [DOI:10.1086/427701]
10. Mohanasoundaram KM, Lalitha MK. Comparison of phenotypic versus genotypic methods in the detection of methicillin resistance in Staphylococcus aureus. Indian J Med Res 2008;127:78-84.
11. Méndez-Álvarez S, Pérez-Hernández X, Claverie-Martín F. Glycopeptide resistance in enterococci. Int Microbiol 2010;3:71-80.
12. Muneeri SS, Mobaiyen H, Mirzaie H. Study on Vancomycin-resistant staphylococcus aureus and identification of VanA gene in these strains isolated from Tabriz Shuhada Hospital using e-test and PCR methods. Life Sci J 2013;10:748-52.
13. Weinstock DM, Conlon M, Iovino C, Aubrey T, Gudiol C, Riedel E, et al. Colonization, bloodstream infection, and mortality caused by vancomycin-resistant enterococcus early after allogeneic hematopoietic stem cell transplant. Biol Blood Marrow Transplant 2007;13:615-21. [DOI:10.1016/j.bbmt.2007.01.078]
14. Chang S, Sievert DM, Hageman JC, Boulton ML, Tenover FC, Downes FP, et al. Infection with vancomycinresistant Staphylococcus aureus containing the vanA resistance gene. N Engl J Med 2003;348:1342-7. [DOI:10.1056/NEJMoa025025]
15. Dutka-Malen S, Molinas C, Arthur M, Courvalin P. The VanA glycopeptide resistance protein is related to D-alanyl-D-alanine ligase cell wall biosynthesis enzymes. Mol Gen Genet 1990;224:364-72. [DOI:10.1007/BF00262430]
16. Moza B, Varma AK, Buonpane RA, Zhu P, Herfst CA, Nicholson MJ, et al. Structural basis of T-cell specificity and activation by the bacterial superantigen TSST-1. EMBO J 2007;26:1187-97. [DOI:10.1038/sj.emboj.7601531]
17. Mohajeri P, Izadi B, Rezaei M, Falahi B, Moradi Z, Zare ME. Study of nasal carriage Methicillin resistant Staphylococcus aureus in hemodialysis patients in Kermanshah. J Kermanshah Univ Med Sci 2012;15:485-92.
18. Saha B, Singh AK, Ghosh A, Bal M. Identification and Characterization of a vancomycin resistant staphylococcus aureus isolated from Kolkata (South Asia). J Med Microbiol 2008;57:79-2. [DOI:10.1099/jmm.0.47144-0]
19. Safdari H, Sadeghian A. Susceptibility of Staphylococcus aureus, the most common antibiotics Ghaem Hospital in Mashhad in year 1390. 1390;1:43-6.
20. Ahmadishoar SH, Nahaei MR, Amirmozafari N. Sensitivity of strains isolated from clinical specimens against vancomycin using E-test in tabriz. TUOMS 2008;30:17-23.
21. Nicoletti G, Schito G, Fadda G, Boros S, Nicolosi D, Marchese A, et al. Bactrial isolates from sever infections and their antibiotic susceptibility patterns in Italy: a among methicillin resistant Staphylococcus aureus isolates from intensive care units of Nation wide study in the hospital setting. J Chemother 2006;18:589-602. [DOI:10.1179/joc.2006.18.6.589]
22. Thati V, Shivannavar CT, Gaddad SM. Vancomycin resistance tertiary care hospitals in Hyderabad. Indian J Med Res 2011;134:704-8. [DOI:10.4103/0971-5916.91001]
23. Farhadian A, Behzadian Nejad Q, Najar Peerayeh SH, Rahbar M, Vaziri F. etermination of vancomycin and methicillin Resistance in clinical Isolates of staphylococcus aureus in Iranian Hospitals. Br Microbiol Res J 2008;4:454-61. [DOI:10.9734/BMRJ/2014/4836]
24. Hiramatsu K, Suzuki E,Takayama H, Katayama Y, Yokota T. Role ofpenicillinase plasmids in310the stability of the mecA gene in methicillinresistant Staphylococcus aureus. Antimicrob Agents Chemother 1990;34:600-4. [DOI:10.1128/AAC.34.4.600]



XML   English Abstract   Print



دوره 28، شماره 1 - ( بهار 1397 ) برگشت به فهرست نسخه ها