[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
:: دوره 28، شماره 1 - ( بهار 1397 ) ::
جلد 28 شماره 1 صفحات 44-49 برگشت به فهرست نسخه ها
تاثیر مصرف ویتامین C بر آسیب کبدی پس از مصرف متوتروکسات در موش صحرایی
بهزاد جمالی* 1، سجاد جمالی2، ناصر شکری کله سر3
1- باشگاه پژوهشگران جوان ونخبگان ، واحد تبریز، دانشگاه آزاداسلامی ، تبریز، ایران ، behzadjamali100@yahoo.com
2- باشگاه پژوهشگران جوان ونخبگان ، واحد تبریز، دانشگاه آزاداسلامی ، تبریز، ایران
3- گروه بیوشیمی ، واحد اردبیل ، دانشگاه آزاد اسلامی ، اردبیل ، ایران
چکیده:   (569 مشاهده)
سابقه و هدف: متوتروکسات یک آنتاگونیست اسید فولیک است که به طور گسترده به عنوان داروی شیمی درمانی سایتوتوکسیک برای لوسمی و سایر بدخیمی­ها استفاده می­شود. متوتروکسات باعث اختلالات ساختاری و عملکردی در کبد می­شود. این مطالعه در نظر دارد اثرات حمایتی ویتامین C برتغییرات هیستولوژیکی و بیوشیمیایی ناشی از سمیت مزمن متوتروکسات بر کبد موش­های صحرایی نر را بررسی کند.
روش بررسی: در این مطالعه تجربی، 30 موش به سه گروه تقسیم شدند. گروه 1 (گروه شاهد) نرمال سالین 9/0% به صورت داخل صفاقی برای 10 روز متوالی دریافت کردند. گروه2، mg/kg20 داروی متوتروکسات به صورت داخل صفاقی برای ده روز متوالی دریافت کردند. گروه 3 به همراه داروی متوتروکسات، mg/kg25 ویتامین C به صورت داخل صفاقی برای ده روز متوالی دریافت کردند. در پایان ده روز، موش­ها بیهوش و سرم آنها جهت ارزیابی فاکتورهای بیوشیمیایی در فریزر نگهداری شد. بعد از قطع نخاع گردنی، کبد آنها جهت مطالعات بافت شناسی خارج شد.
یافته­ها: مقادیر آسپارتات ترانس آمیناز (AST)، آلانین آمینوترانسفراز (ALT) سرم در موش­های دریافت کننده ویتامین C به طور معنی­داری کمتر از موش­های در معرض متوتروکسات بود. در موش­های در معرض ویتامین C و متوتروکسات، تغییرات هیستولوژیکی کمتری نسبت به گروه در معرض متوتروکسات مشاهده شد.
نتیجه­گیری: از نتایج این مطالعه نتیجه­گیری می­شود ویتامین C ممکن است نقش مفیدی در جلوگیری از آسیب کبدی ناشی از متوتروکسات داشته باشد.
واژه‌های کلیدی: آسکوربیک اسید، کبد، آسیب، متوتروکسات، موش صحرایی
متن کامل [PDF 320 kb]   (121 دریافت)    
نوع مطالعه: تجربي | موضوع مقاله: علوم آزمايشگاهي
دریافت: ۱۳۹۶/۲/۲۷ | پذیرش: ۱۳۹۶/۵/۳ | انتشار: ۱۳۹۷/۱/۱۲
فهرست منابع
1. Cetinkaya A, Bulbuloglu E, Kurutas EB, Kantarceken B. N-acetylcysteine ameliorates methotrexate-induced oxidative liver damage in rats. Med Sci Monit 2006;12:BR274-8.
2. Jahovic N, Cevik H, Sehirli AO, Yeğen BC, Sener G. Melatonin prevents methotrexate-induced hepatorenal oxidative injury in rats. J Pineal Res 2003;34:282-7. [DOI:10.1034/j.1600-079X.2003.00043.x]
3. Renes IB, Verburg M, Bulsing NP, Ferdinandusse S, Büller HA, Dekker J, et al. Protection of the Peyer's patch-associated crypt and villus epithelium against methotrexate-induced damage is based on its distinct regulation of proliferation. J Pathol 2002;198:60-8. [DOI:10.1002/path.1183]
4. Oktem F, Yilmaz HR, Ozguner F, Olgar S, Ayata A, Uzare E, et al. Methotrexate-induced renal oxidative stress in rats: the role of a novel antioxidant caffeic acid phenethyl ester. Toxicol Ind Health 2006;22:241-7. [DOI:10.1191/0748233706th265oa]
5. Li T, Ito K, Sumi S, Fuwa T, Horie T. Protective effect of aged garlic extract (AGE) on the apoptosis of intestinal epithelial cells caused by methotrexate. Cancer Chemother Pharmacol 2009;63:873-80. [DOI:10.1007/s00280-008-0809-4]
6. Uzar E, Koyuncuoglu HR, Uz E, Yilmaz HR, Kutluhan S, Kilbas S, et al. The activities of antioxidant enzymes and the level of malondialdehyde in cerebellum of rats subjected to methotrexate: protective effect of caffeic acid phenethyl ester. Mol Cell Biochem 2006;291:63-8. [DOI:10.1007/s11010-006-9196-5]
7. Vardi N, Parlakpinar H, Ozturk F, Ates B, Gul M, Cetin A, et al. Potent protective effect of apricot and beta-carotene on methotrexate-induced intestinal oxidative damage in rats. Food Chem Toxicol 2008;46:3015-22. [DOI:10.1016/j.fct.2008.05.039]
8. Kojo S. Vitamin C: basic metabolism and its function as an index of oxidative stress. Curr Med Chem 2004;11:1041-64. [DOI:10.2174/0929867043455567]
9. Kasparová S, Brezová V, Valko M, Horecký J, Mlynárik V, Liptaj T, et al. Study of the oxidative stress in a rat model of chronic brain hypoperfusion. Neurochem Int 2005;46:601-11. [DOI:10.1016/j.neuint.2005.02.006]
10. Ghosh S, Ghosh D, Chattopadhyay S, Debnath J. Effect of ascorbic acid supplementation on liver and kidney toxicity in cyclophosphamide-treated female albino rats. J Toxicol Sci 1999;24:141-4. [DOI:10.2131/jts.24.3_141]
11. Gut I, Danielová V, Holubová J, Soucek P, Klucková H. Cytotoxicity of cyclophosphamide, paclitaxel, and docetaxel for tumor cell lines in vitro:effects of concentration, time and cytochrome P450-catalyzed metabolism. Arch Toxicol 2000;74:437-46. [DOI:10.1007/s002040000141]
12. Ray S, Sengupta C, Roy K. Evaluation of ascorbic acid as suppressor of cyclophosphamide induced lipid peroxidation using common laboratory markers. Act Pol Pharm 2005;62:145-52.
13. Singh S, Rana SV. Ascorbic acid improves mitochondrial function in liver of arsenic-treated rat. Toxicol Ind Health 2010;26:265-72. [DOI:10.1177/0748233710365694]
14. Valko M, Rhodes CJ, Moncol J, Izakovic M, Mazur M. Free radicals, metals and antioxidants in oxidative stress-induced cancer. Chem Biol Interact 2006;160:1-40. [DOI:10.1016/j.cbi.2005.12.009]
15. Tahan G, Tarcin O, Tahan V, Eren F, Gedik N, Sahan E, et al. The effects of N-acetylcysteine on bile duct ligation-induced liver fibrosis in rats. Dig Dis Sci 2007;52:3348-54. [DOI:10.1007/s10620-006-9717-9]
16. Valko M, Izakovic M, Mazur M, Rhodes CJ, Telser J. Role of oxygen radicals in DNA damage and cancer incidence. Mol Cell Biochem 2004;266:37-56. [DOI:10.1023/B:MCBI.0000049134.69131.89]
17. Loschen G, Flohé L, Chance B. Respiratory chain linked H(2)O(2) production in pigeon heart mitochondria. FEBS Lett 1971;18:261-4. [DOI:10.1016/0014-5793(71)80459-3]
18. Bergmeyer HU, Hørder M, Rej R. International Federation of Clinical Chemistry (IFCC) Scientific Committee, Analytical Section: approved recommendation (1985) on IFCC methods for the measurement of catalytic concentration of enzymes. Part 3. IFCC method for alanine aminotransferase (L-alanine: 2-oxoglutarate aminotransferase, EC 2.6.1.2). J Clin Chem Clin Biochem 1986;24:481-95.
19. Bergmeyer HU, Hørder M, Rej R. International Federation of Clinical Chemistry (IFCC) Scientific Committee, Analytical Section: approved recommendation (1985) on IFCC methods for the measurement of catalytic concentration of enzymes. Part 2. IFCC method for aspartate aminotransferase (L-aspartate: 2-oxoglutarate aminotransferase, EC 2.6.1.1). J Clin Chem Clin Biochem 1986;24:497-510.
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA code


XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Jamali B, Jamali S, Shokri Kalehsar N. Effect of vitamin C on liver injury after taking methotrexate in rats. MEDICAL SCIENCES. 2018; 28 (1) :44-49
URL: http://iau-tmuj.ir/article-1-1372-fa.html

جمالی بهزاد، جمالی سجاد، شکری کله سر ناصر. تاثیر مصرف ویتامین C بر آسیب کبدی پس از مصرف متوتروکسات در موش صحرایی . فصلنامه علوم پزشکی . 1397; 28 (1) :44-49

URL: http://iau-tmuj.ir/article-1-1372-fa.html



دوره 28، شماره 1 - ( بهار 1397 ) برگشت به فهرست نسخه ها
فصلنامه علوم پزشکی دانشگاه آزاد اسلامی واحد پزشکی تهران Medical Science Journal of Islamic Azad Univesity - Tehran Medical Branch
Persian site map - English site map - Created in 0.07 seconds with 30 queries by YEKTAWEB 3729